吸光度为什么会偏大
@卜轰1496：为什么随着浓度增加,吸光值会增大 -
令维13044591508…… 因为浓度增加,意味着同样体积时,相应的分子数目就会增加,而分子数目增加,相应的,就会吸收相应的波长,于是就相当于吸光值增大了. 简单地说,就是人多了,要吃的饭自然也会变多.
@卜轰1496：加热后,溶液的吸光度增大,是因为什么,求专业解答. 跪谢! -
令维13044591508…… 这是一个定理吧,是很多实验总结的结果,这个结论记住就可以了.还有根据比尔定律,吸光度与吸光物质的量浓度c成正比.
@卜轰1496：同样波长下,一种溶液吸光度大小不同的原因 -
令维13044591508…… 加和性一般是指两者在同一波长处吸光度等于各物质在此波长处的吸光度之和
@卜轰1496：为什么原子吸收分光光度法要用去离子水配制和稀释溶液 -
令维13044591508…… 因为天然水中含有多种金属离子、有机物、颗粒物之和胶体. 首先金属离子会使测量结果偏大,比如我们测量食品中的含钙量,如果用自来水配置,而自来水中本来就含有很高浓度的钙离子,导致结果极不准确. 水中的有机物在火焰中可能生成小颗粒的炭黑以及其他具有光吸收性质的物质,AAS本来测的是吸光度,就是溶液中的待测离子对锐线光源的吸收,现在由于颗粒的挡光等原因导致吸光度增大,当然导致结果不准确. 颗粒物可胶体一方面可能导致AAS的雾化系统堵塞,同时也可能导致吸光度偏大. 所以,综上所述,为了防止结果偏大或者堵塞仪器,通常要用去离子水.配置溶液以及稀释溶液. 当然还有一些其他因素,但是以上是主要的.
@卜轰1496：为什么用标准曲线的溶液不能久置 -
令维13044591508…… 久置会影响显色,一般显色在10~20min内比较稳定,可以测吸光度,超过这个时间段,根据实验的不同,显色会随着时间的推移加深或变淡,而结果会偏大或偏小.
@卜轰1496：如果比色皿中液体有气泡,结果是偏大吗 -
令维13044591508…… 是的,都有影响是肯定的, 比色皿是利用光的波长来测定物质数据,为此如果有杂质对这种测定是有影响的
@卜轰1496：BCA法测蛋白浓度吸光值显示为4怎么回事 -
令维13044591508…… BCA法测蛋白浓度吸光值显示为4那就说明蛋白浓度太高了 正常的分光光度法检测蛋白的读数范围最好是在0.2~0.85,太高太低线性误差都会偏大 如果吸光值读数是4,那就是浓度太高或者干扰因素太多,这个读数已经不再线性范围之内了.要将样品稀释几倍再去检测
@卜轰1496：怎么通过excel绘制的标准曲线计算样品浓度 -
令维13044591508…… 绘图时最好用XY散点图.生成图表后,选择生成的曲线,之后在曲线上点击右键,选择“添加趋势线”,在“类型”中,选择最接近的曲线形式.比如你的曲线接近线性,则选择“线性”,若接近乘幂的形式,则选择“乘幂”,如果比较难判断,则选择“多项式”,并调整其阶数.之后切换到“选项”标签页,选择“显示公式”,确定.此时,就会在图表中出现一个公式,即浓度对吸光度的关系. 在单元格中输入该公式(其中的X值用具体的单元格引用代替),即可根据该公式计算出样品的浓度.
@卜轰1496：蛋白质样品加入考马斯亮蓝染色液后,测得的吸光度不在标准曲线的范围该数据是否可靠?不可靠,如何改进? -
令维13044591508…… 不可靠.如果吸光度偏大,就稀释减少样品用量;偏小就多加样品.
@卜轰1496：分光光度计两次调零前后所测数据不一致,不知什么原因,分光光度计预热20分钟后第一次测甲基橙的吸光度是1.510,第二次调零后测得数据是1.720,以后... - 作业帮
令维13044591508…… [答案] 几点可能出现的情况: 1.你的溶液很浓(吸光度都达到1.5以上了),可能是因为第一次测量之后比色皿没有洗干净,比色皿内壁上还有残留而导致第二次测量值偏大.建议把比色皿洗净烘干,不润洗,直接加入你的甲基橙样品,多来几个平行试试; ...
令维13044591508…… 因为浓度增加,意味着同样体积时,相应的分子数目就会增加,而分子数目增加,相应的,就会吸收相应的波长,于是就相当于吸光值增大了. 简单地说,就是人多了,要吃的饭自然也会变多.
@卜轰1496：加热后,溶液的吸光度增大,是因为什么,求专业解答. 跪谢! -
令维13044591508…… 这是一个定理吧,是很多实验总结的结果,这个结论记住就可以了.还有根据比尔定律,吸光度与吸光物质的量浓度c成正比.
@卜轰1496：同样波长下,一种溶液吸光度大小不同的原因 -
令维13044591508…… 加和性一般是指两者在同一波长处吸光度等于各物质在此波长处的吸光度之和
@卜轰1496：为什么原子吸收分光光度法要用去离子水配制和稀释溶液 -
令维13044591508…… 因为天然水中含有多种金属离子、有机物、颗粒物之和胶体. 首先金属离子会使测量结果偏大,比如我们测量食品中的含钙量,如果用自来水配置,而自来水中本来就含有很高浓度的钙离子,导致结果极不准确. 水中的有机物在火焰中可能生成小颗粒的炭黑以及其他具有光吸收性质的物质,AAS本来测的是吸光度,就是溶液中的待测离子对锐线光源的吸收,现在由于颗粒的挡光等原因导致吸光度增大,当然导致结果不准确. 颗粒物可胶体一方面可能导致AAS的雾化系统堵塞,同时也可能导致吸光度偏大. 所以,综上所述,为了防止结果偏大或者堵塞仪器,通常要用去离子水.配置溶液以及稀释溶液. 当然还有一些其他因素,但是以上是主要的.
@卜轰1496：为什么用标准曲线的溶液不能久置 -
令维13044591508…… 久置会影响显色,一般显色在10~20min内比较稳定,可以测吸光度,超过这个时间段,根据实验的不同,显色会随着时间的推移加深或变淡,而结果会偏大或偏小.
@卜轰1496：如果比色皿中液体有气泡,结果是偏大吗 -
令维13044591508…… 是的,都有影响是肯定的, 比色皿是利用光的波长来测定物质数据,为此如果有杂质对这种测定是有影响的
@卜轰1496：BCA法测蛋白浓度吸光值显示为4怎么回事 -
令维13044591508…… BCA法测蛋白浓度吸光值显示为4那就说明蛋白浓度太高了 正常的分光光度法检测蛋白的读数范围最好是在0.2~0.85,太高太低线性误差都会偏大 如果吸光值读数是4,那就是浓度太高或者干扰因素太多,这个读数已经不再线性范围之内了.要将样品稀释几倍再去检测
@卜轰1496：怎么通过excel绘制的标准曲线计算样品浓度 -
令维13044591508…… 绘图时最好用XY散点图.生成图表后,选择生成的曲线,之后在曲线上点击右键,选择“添加趋势线”,在“类型”中,选择最接近的曲线形式.比如你的曲线接近线性,则选择“线性”,若接近乘幂的形式,则选择“乘幂”,如果比较难判断,则选择“多项式”,并调整其阶数.之后切换到“选项”标签页,选择“显示公式”,确定.此时,就会在图表中出现一个公式,即浓度对吸光度的关系. 在单元格中输入该公式(其中的X值用具体的单元格引用代替),即可根据该公式计算出样品的浓度.
@卜轰1496：蛋白质样品加入考马斯亮蓝染色液后,测得的吸光度不在标准曲线的范围该数据是否可靠?不可靠,如何改进? -
令维13044591508…… 不可靠.如果吸光度偏大,就稀释减少样品用量;偏小就多加样品.
@卜轰1496：分光光度计两次调零前后所测数据不一致,不知什么原因,分光光度计预热20分钟后第一次测甲基橙的吸光度是1.510,第二次调零后测得数据是1.720,以后... - 作业帮
令维13044591508…… [答案] 几点可能出现的情况: 1.你的溶液很浓(吸光度都达到1.5以上了),可能是因为第一次测量之后比色皿没有洗干净,比色皿内壁上还有残留而导致第二次测量值偏大.建议把比色皿洗净烘干,不润洗,直接加入你的甲基橙样品,多来几个平行试试; ...
