怎样把5的buffer稀释成2
@万乳731：6*的buffer怎么稀释成5*的 -
乌宝13147856148…… 比如你有1ml的6*的Buffer 加0.2ml的水 即可得到5*的Buffer
@万乳731：6*的buffer怎么稀释成5*的 - 作业帮
乌宝13147856148…… [答案] 比如你有1ml的6*的Buffer 加0.2ml的水 即可得到5*的Buffer
@万乳731：求助蛋白电泳1*loading buffer -
乌宝13147856148…… 蛋白电泳1*loading buffer可以配制出来,但是却很难在实际使用的时候用上 比如说蛋白电泳5*loading buffer,在使用的时候也就是1个体积的loading buffer要加上4个体积的蛋白样品.这样最后的蛋白电泳loading buffer就被稀释到1*loading buffer 如果说1*loading buffer就是说1体积的loading buffer要加上0体积的蛋白样品,这样的loading buffer配制出来也没办法用.所以说蛋白电泳1*loading buffer是指应用时的情况,而不是配制的浓度
@万乳731：5*Tris - 硼酸(TBE)缓冲液稀释成0.5*的工作液怎么稀释? - 作业帮
乌宝13147856148…… [答案] 取十毫升5*TBE加入90毫升的水,就是0.5*的了.
@万乳731：请问5TBE Buffer 溶液的配方???? -
乌宝13147856148…… 对不起,修改一下答案! TBE 工作液(0.5*): 45mmol/L Tris-硼酸盐,1mmol/L EDTA TBE 贮存液/L(5*):54g Tris,27.5g 硼酸,20ml 0.5mol/L EDTA(pH8.0) TBE通常作为5*或10*的贮存液配制和贮存.这种浓的贮存液pH应为8.3左右.它在应用前稀释,并用同一贮存液制备凝胶溶液和电泳缓冲液.有些研究者习惯用更浓的TBE贮存液,如10*的.但是5*的贮存液更稳定,因为贮存期间溶质不沉淀.经0.45μm滤膜过滤能防止延迟浓的贮存液沉淀的形成.
@万乳731：求助缓冲液的配置
乌宝13147856148…… sodium phosphate buffer 5mM ph7.0先配1M二氢与二钠的母液,用二氢调二钠至pH7.0,稀释后使用,有条件的话全稀释成5mM后再调pH更好.
@万乳731：5*非还原样品缓冲液怎样稀释成2*非还原样品缓冲液 -
乌宝13147856148…… 4*和5*的上样缓冲液的区别就是加样的比例不一样. 4*上样缓冲液使用方法: 1、按每30微升蛋白样品加入10微升上样缓冲液的比例(4倍稀释)来使用.如果蛋白浓度过高,可用双蒸水稀释. 2、混匀后,100℃水浴加热5-10分钟,使蛋白变...
@万乳731：电泳时loading buffer和样品DNA比例多少?实验室常用6x的,为毛有人用1:5,有人1:1呢?请大神解答,3Q~ -
乌宝13147856148…… 这玩意,说白了就是溴酚蓝做一个参照,你不加都一样的能够跑出条带来,我从来都是1:10加的,没问题.所谓6X就是稀释6倍使用,你如果严格的话按1:5加.
@万乳731：SDS - PAGE 5Xloading buffer 配制过程,注意,问的不是配方,高手进 -
乌宝13147856148…… 我想说以下几点: 1.SDS-PAGE loading buffer一般配成2X 的,5X loading buffer确实过于粘稠,且SDS在低温下难溶于水,这就导致你配的buffer“摇都摇不动”了 2.不知你为何要配那么多loading buffer(况且是5X的),这些东西都是用量很...
@万乳731：DNA琼脂糖凝胶电泳的loading buffer作用是?6*的一定要稀释成1*的使用吗? - 作业帮
乌宝13147856148…… [答案] 作用:使DNA粘度增大,不要再点样中被漂离凝胶; 加入的指示剂 可指示前沿. 1*的浓度 是个经验.浓度太大,可能产生 DNA和buffer中物质难以分开,拖带;指示剂前沿太宽等 适当增加浓度 没问题,但没必要.
乌宝13147856148…… 比如你有1ml的6*的Buffer 加0.2ml的水 即可得到5*的Buffer
@万乳731：6*的buffer怎么稀释成5*的 - 作业帮
乌宝13147856148…… [答案] 比如你有1ml的6*的Buffer 加0.2ml的水 即可得到5*的Buffer
@万乳731：求助蛋白电泳1*loading buffer -
乌宝13147856148…… 蛋白电泳1*loading buffer可以配制出来,但是却很难在实际使用的时候用上 比如说蛋白电泳5*loading buffer,在使用的时候也就是1个体积的loading buffer要加上4个体积的蛋白样品.这样最后的蛋白电泳loading buffer就被稀释到1*loading buffer 如果说1*loading buffer就是说1体积的loading buffer要加上0体积的蛋白样品,这样的loading buffer配制出来也没办法用.所以说蛋白电泳1*loading buffer是指应用时的情况,而不是配制的浓度
@万乳731：5*Tris - 硼酸(TBE)缓冲液稀释成0.5*的工作液怎么稀释? - 作业帮
乌宝13147856148…… [答案] 取十毫升5*TBE加入90毫升的水,就是0.5*的了.
@万乳731：请问5TBE Buffer 溶液的配方???? -
乌宝13147856148…… 对不起,修改一下答案! TBE 工作液(0.5*): 45mmol/L Tris-硼酸盐,1mmol/L EDTA TBE 贮存液/L(5*):54g Tris,27.5g 硼酸,20ml 0.5mol/L EDTA(pH8.0) TBE通常作为5*或10*的贮存液配制和贮存.这种浓的贮存液pH应为8.3左右.它在应用前稀释,并用同一贮存液制备凝胶溶液和电泳缓冲液.有些研究者习惯用更浓的TBE贮存液,如10*的.但是5*的贮存液更稳定,因为贮存期间溶质不沉淀.经0.45μm滤膜过滤能防止延迟浓的贮存液沉淀的形成.
@万乳731：求助缓冲液的配置
乌宝13147856148…… sodium phosphate buffer 5mM ph7.0先配1M二氢与二钠的母液,用二氢调二钠至pH7.0,稀释后使用,有条件的话全稀释成5mM后再调pH更好.
@万乳731：5*非还原样品缓冲液怎样稀释成2*非还原样品缓冲液 -
乌宝13147856148…… 4*和5*的上样缓冲液的区别就是加样的比例不一样. 4*上样缓冲液使用方法: 1、按每30微升蛋白样品加入10微升上样缓冲液的比例(4倍稀释)来使用.如果蛋白浓度过高,可用双蒸水稀释. 2、混匀后,100℃水浴加热5-10分钟,使蛋白变...
@万乳731：电泳时loading buffer和样品DNA比例多少?实验室常用6x的,为毛有人用1:5,有人1:1呢?请大神解答,3Q~ -
乌宝13147856148…… 这玩意,说白了就是溴酚蓝做一个参照,你不加都一样的能够跑出条带来,我从来都是1:10加的,没问题.所谓6X就是稀释6倍使用,你如果严格的话按1:5加.
@万乳731：SDS - PAGE 5Xloading buffer 配制过程,注意,问的不是配方,高手进 -
乌宝13147856148…… 我想说以下几点: 1.SDS-PAGE loading buffer一般配成2X 的,5X loading buffer确实过于粘稠,且SDS在低温下难溶于水,这就导致你配的buffer“摇都摇不动”了 2.不知你为何要配那么多loading buffer(况且是5X的),这些东西都是用量很...
@万乳731：DNA琼脂糖凝胶电泳的loading buffer作用是?6*的一定要稀释成1*的使用吗? - 作业帮
乌宝13147856148…… [答案] 作用:使DNA粘度增大,不要再点样中被漂离凝胶; 加入的指示剂 可指示前沿. 1*的浓度 是个经验.浓度太大,可能产生 DNA和buffer中物质难以分开,拖带;指示剂前沿太宽等 适当增加浓度 没问题,但没必要.
