5buffer怎么稀释到1
@司媛2757：6*的buffer怎么稀释成5*的 -
太幸13494605673…… 比如你有1ml的6*的Buffer 加0.2ml的水 即可得到5*的Buffer
@司媛2757：求助蛋白电泳1*loading buffer -
太幸13494605673…… 蛋白电泳1*loading buffer可以配制出来,但是却很难在实际使用的时候用上 比如说蛋白电泳5*loading buffer,在使用的时候也就是1个体积的loading buffer要加上4个体积的蛋白样品.这样最后的蛋白电泳loading buffer就被稀释到1*loading buffer 如果说1*loading buffer就是说1体积的loading buffer要加上0体积的蛋白样品,这样的loading buffer配制出来也没办法用.所以说蛋白电泳1*loading buffer是指应用时的情况,而不是配制的浓度
@司媛2757：请问5TBEBuffer溶液的配方????谢谢
太幸13494605673…… 对不起,修改一下答案!TBE 工作液(0.5*): 45mmol/L Tris-硼酸盐,1mmol/L EDTATBE 贮存液/L(5*):54g Tris,27.5g 硼酸,20ml 0.5mol/L EDTA(pH8.0)TBE通常作为5*或10*的贮存液配制和贮存.这种浓的贮存液pH应为8.3左右.它在应用前稀释,并用同一贮存液制备凝胶溶液和电泳缓冲液.有些研究者习惯用更浓的TBE贮存液,如10*的.但是5*的贮存液更稳定,因为贮存期间溶质不沉淀.经0.45μm滤膜过滤能防止延迟浓的贮存液沉淀的形成.
@司媛2757：5*非还原样品缓冲液怎样稀释成2*非还原样品缓冲液 -
太幸13494605673…… 4*和5*的上样缓冲液的区别就是加样的比例不一样. 4*上样缓冲液使用方法: 1、按每30微升蛋白样品加入10微升上样缓冲液的比例(4倍稀释)来使用.如果蛋白浓度过高,可用双蒸水稀释. 2、混匀后,100℃水浴加热5-10分钟,使蛋白变...
@司媛2757：百分之五新结尔灭怎样稀释到百分之零点一?而且最后百分之零点一是五百毫升? - 作业帮
太幸13494605673…… [答案] 取5%的洁而灭溶液10ml,加水稀释到500 ml,摇匀就行
@司媛2757：loading buffer 怎么调蛋白浓 -
太幸13494605673…… 要用loading buffer来调整蛋白浓度,可以通过配制出不同浓度的loading buffer来实现 最终加入到蛋白样品的loading buffer应该是1个单位的 可以通过配制出2~10个单位不等的loading buffer来调整蛋白浓度 比如2个单位的loading buffer加入蛋白样品,可以将蛋白浓度稀释一倍 而4个单位的loading buffer加入蛋白样品,就只能稀释25% 所以可以通过配制出不同浓度的loading buffer来调整蛋白浓度
@司媛2757：...问如果是双梅切,a酶用1ul,b酶用2ul,那么反应体系到底是(1+2)*10,还是2*10?2 如果反应总体积是50ul,那么10*buffer加多少,5*buffer呢,2*buffer呢... - 作业帮
太幸13494605673…… [答案] 1.是2*10 2.分别是50/10=5,50/5=10,50/2=25. 一般来说几*就是对buffer稀释几倍.
@司媛2757：急!!!谁能告诉我8*binding buffer 如何稀释为1*binding buffer??? -
太幸13494605673…… 1ul8*binding buffer加7ul的水就得到1*binding buffer 全实际有可能不是这样,你还得加入一些别的东西,(你需要结合的东西) 这样一般是加入你样品量的七分之一.使binding buffer终浓度为1* 比如有1ml样品,加入167ul的8*binding buffer ,混匀就可以上柱或者做别的处理.
@司媛2757：5%新洁尔灭配成0.1%浓度500ML怎么配 -
太幸13494605673…… (1)500D *0.1% == Vd*5% (2) V== 500D *0.1% / d*5% == 10D/d == 10ml (3)取10ml 原液,稀释到500ml!
@司媛2757：DNA琼脂糖凝胶电泳的loading buffer作用是?6*的一定要稀释成1*的使用吗? - 作业帮
太幸13494605673…… [答案] 作用:使DNA粘度增大,不要再点样中被漂离凝胶; 加入的指示剂 可指示前沿. 1*的浓度 是个经验.浓度太大,可能产生 DNA和buffer中物质难以分开,拖带;指示剂前沿太宽等 适当增加浓度 没问题,但没必要.
太幸13494605673…… 比如你有1ml的6*的Buffer 加0.2ml的水 即可得到5*的Buffer
@司媛2757：求助蛋白电泳1*loading buffer -
太幸13494605673…… 蛋白电泳1*loading buffer可以配制出来,但是却很难在实际使用的时候用上 比如说蛋白电泳5*loading buffer,在使用的时候也就是1个体积的loading buffer要加上4个体积的蛋白样品.这样最后的蛋白电泳loading buffer就被稀释到1*loading buffer 如果说1*loading buffer就是说1体积的loading buffer要加上0体积的蛋白样品,这样的loading buffer配制出来也没办法用.所以说蛋白电泳1*loading buffer是指应用时的情况,而不是配制的浓度
@司媛2757：请问5TBEBuffer溶液的配方????谢谢
太幸13494605673…… 对不起,修改一下答案!TBE 工作液(0.5*): 45mmol/L Tris-硼酸盐,1mmol/L EDTATBE 贮存液/L(5*):54g Tris,27.5g 硼酸,20ml 0.5mol/L EDTA(pH8.0)TBE通常作为5*或10*的贮存液配制和贮存.这种浓的贮存液pH应为8.3左右.它在应用前稀释,并用同一贮存液制备凝胶溶液和电泳缓冲液.有些研究者习惯用更浓的TBE贮存液,如10*的.但是5*的贮存液更稳定,因为贮存期间溶质不沉淀.经0.45μm滤膜过滤能防止延迟浓的贮存液沉淀的形成.
@司媛2757：5*非还原样品缓冲液怎样稀释成2*非还原样品缓冲液 -
太幸13494605673…… 4*和5*的上样缓冲液的区别就是加样的比例不一样. 4*上样缓冲液使用方法: 1、按每30微升蛋白样品加入10微升上样缓冲液的比例(4倍稀释)来使用.如果蛋白浓度过高,可用双蒸水稀释. 2、混匀后,100℃水浴加热5-10分钟,使蛋白变...
@司媛2757：百分之五新结尔灭怎样稀释到百分之零点一?而且最后百分之零点一是五百毫升? - 作业帮
太幸13494605673…… [答案] 取5%的洁而灭溶液10ml,加水稀释到500 ml,摇匀就行
@司媛2757：loading buffer 怎么调蛋白浓 -
太幸13494605673…… 要用loading buffer来调整蛋白浓度,可以通过配制出不同浓度的loading buffer来实现 最终加入到蛋白样品的loading buffer应该是1个单位的 可以通过配制出2~10个单位不等的loading buffer来调整蛋白浓度 比如2个单位的loading buffer加入蛋白样品,可以将蛋白浓度稀释一倍 而4个单位的loading buffer加入蛋白样品,就只能稀释25% 所以可以通过配制出不同浓度的loading buffer来调整蛋白浓度
@司媛2757：...问如果是双梅切,a酶用1ul,b酶用2ul,那么反应体系到底是(1+2)*10,还是2*10?2 如果反应总体积是50ul,那么10*buffer加多少,5*buffer呢,2*buffer呢... - 作业帮
太幸13494605673…… [答案] 1.是2*10 2.分别是50/10=5,50/5=10,50/2=25. 一般来说几*就是对buffer稀释几倍.
@司媛2757：急!!!谁能告诉我8*binding buffer 如何稀释为1*binding buffer??? -
太幸13494605673…… 1ul8*binding buffer加7ul的水就得到1*binding buffer 全实际有可能不是这样,你还得加入一些别的东西,(你需要结合的东西) 这样一般是加入你样品量的七分之一.使binding buffer终浓度为1* 比如有1ml样品,加入167ul的8*binding buffer ,混匀就可以上柱或者做别的处理.
@司媛2757：5%新洁尔灭配成0.1%浓度500ML怎么配 -
太幸13494605673…… (1)500D *0.1% == Vd*5% (2) V== 500D *0.1% / d*5% == 10D/d == 10ml (3)取10ml 原液,稀释到500ml!
@司媛2757：DNA琼脂糖凝胶电泳的loading buffer作用是?6*的一定要稀释成1*的使用吗? - 作业帮
太幸13494605673…… [答案] 作用:使DNA粘度增大,不要再点样中被漂离凝胶; 加入的指示剂 可指示前沿. 1*的浓度 是个经验.浓度太大,可能产生 DNA和buffer中物质难以分开,拖带;指示剂前沿太宽等 适当增加浓度 没问题,但没必要.
