5x电泳缓冲液如何稀释成1x
@雕杰4063：western blot 转移缓冲液的配方? -
詹绍18592495494…… 我们实验室的配方如下:5X电泳缓冲液:15.1g Tris+94.0g Gly+5.0g SDS 配成1L 转移缓冲液:3.03g Tris+14.42g Gly+200mL CH3OH 配成1L 效果不错,你可以试一下
@雕杰4063：5*非还原样品缓冲液怎样稀释成2*非还原样品缓冲液 -
詹绍18592495494…… 4*和5*的上样缓冲液的区别就是加样的比例不一样. 4*上样缓冲液使用方法: 1、按每30微升蛋白样品加入10微升上样缓冲液的比例(4倍稀释)来使用.如果蛋白浓度过高,可用双蒸水稀释. 2、混匀后,100℃水浴加热5-10分钟,使蛋白变...
@雕杰4063：tricine - sds - page 阴阳极缓冲液怎么加 -
詹绍18592495494…… 1.阳极缓冲液 ( 10 * ) :121.14g Tris 溶于400ml 蒸馏水,用 1.0mol/L HCl 调至 pH8.9 ,定容至500ml 2.阴极缓冲液 ( 10 * ) :将 60.55g Tris ,89.58g Tricine 及 5g SDS 溶于400ml 蒸馏水中,加水至终体积为500ml 使用时稀释至1*的缓冲液,电泳槽内槽加入阴极电泳缓冲液,外槽加入阳极电泳缓冲液.形成Trcine-SDS-PAGE电泳系统.
@雕杰4063：稀释50*TAE溶液到1*TAE是用蒸馏水还是一般的水? -
詹绍18592495494…… 做胶的TAE当然用双蒸水 如果是槽中使用的电泳缓冲液,单蒸水也可以
@雕杰4063：在电泳中用到的缓冲液,我们经常会看到10X,100X或是6X等,这些代表什么意思?浓度?稀释倍数? -
詹绍18592495494…… 楼上错.不是稀释倍数,相反是浓缩倍数!楼主,你只要记得,所有溶液的使用的时候,浓度都是1X.所以,10X的,代表要稀释10倍才能使用;1000X,就是稀释1000倍;6X就是稀释6倍才能使用.
@雕杰4063：tris - 甘氨酸如何配置电泳缓冲液? -
詹绍18592495494…… 所用试剂:Tris碱,甘氨酸和SDS 含量配方:30.3Tris碱,188g甘氨酸,10gSDS,此产品为干粉混合物.用时可以用双蒸水溶解成1L,配成10倍浓缩液,用时再稀释10倍,配好的电泳液用于SDS-PAGE蛋白电泳,可反复使用三到五次,如果...
@雕杰4063：电泳储液什么意思?是指电泳缓冲液吗? -
詹绍18592495494…… NO,储藏液一般是母液,用的时候需要相应的稀释.所谓母液就是高浓度的储藏液.浓度低容易变质. 电泳储液一般50X , 用的时候要稀释到1X,也就是按1ml 50X 储液 + 49ml 去离子无菌水的比例混匀.
@雕杰4063：TAE缓冲液 配方 -
詹绍18592495494…… 你好,我看了你的推断过程,有一个地方有误:Tris-乙酸不代表Tris与乙酸的比例是一比一,实际上配TAE时,根据所需的pH值,Tris与乙酸比例是2:1的.所以1X :0.04mol/l Tris-乙酸=0.04mol/LTris碱以及0.02mol/L乙酸,相应地你就能算出是57.1ml冰乙酸了. 另外,你发现没有,按照你的1X的配方EDTA是0.001mol/L,那么乘以50为0.05mol/L,而50*配方中是0.1mol/L.这两种配方都是正确的:分子克隆附录上面取的是0.05mol/L,takara的技术手册上用的是0.1mol/L,这个影响不大,主要是鳌合Mg,抑制DNase活性. 希望能够帮到你,有问题继续交流!
@雕杰4063：DNA电泳上样缓冲液怎么配 -
詹绍18592495494…… 50*TAE Buffer 配制方法: 1.称量氨基丁三醇 242g,Na2EDTA.2H2O 37.2g 于1L烧杯中; 2.向烧杯中加入约600ml去离子水,充分搅拌均匀; 3.加入57.1ml的冰乙酸,充分溶解; 4.用NaOH调pH至8.3,加去离子水定容至1L后,室温保存. 使用时稀释50倍 即1*TAE Buffer 10*TBE Buffer配制方法: 1.称量氨基丁三醇 108g,Na2EDTA.2H2O 7.44g,硼酸55g 于1L烧杯中; 2.加入约700ml去离子水,搅拌均匀; 3.用NaOH调pH至8.3,加去离子水定容至1L后,室温保存. 使用时稀释10倍 即1*TBE Buffer
詹绍18592495494…… 我们实验室的配方如下:5X电泳缓冲液:15.1g Tris+94.0g Gly+5.0g SDS 配成1L 转移缓冲液:3.03g Tris+14.42g Gly+200mL CH3OH 配成1L 效果不错,你可以试一下
@雕杰4063：5*非还原样品缓冲液怎样稀释成2*非还原样品缓冲液 -
詹绍18592495494…… 4*和5*的上样缓冲液的区别就是加样的比例不一样. 4*上样缓冲液使用方法: 1、按每30微升蛋白样品加入10微升上样缓冲液的比例(4倍稀释)来使用.如果蛋白浓度过高,可用双蒸水稀释. 2、混匀后,100℃水浴加热5-10分钟,使蛋白变...
@雕杰4063：tricine - sds - page 阴阳极缓冲液怎么加 -
詹绍18592495494…… 1.阳极缓冲液 ( 10 * ) :121.14g Tris 溶于400ml 蒸馏水,用 1.0mol/L HCl 调至 pH8.9 ,定容至500ml 2.阴极缓冲液 ( 10 * ) :将 60.55g Tris ,89.58g Tricine 及 5g SDS 溶于400ml 蒸馏水中,加水至终体积为500ml 使用时稀释至1*的缓冲液,电泳槽内槽加入阴极电泳缓冲液,外槽加入阳极电泳缓冲液.形成Trcine-SDS-PAGE电泳系统.
@雕杰4063：稀释50*TAE溶液到1*TAE是用蒸馏水还是一般的水? -
詹绍18592495494…… 做胶的TAE当然用双蒸水 如果是槽中使用的电泳缓冲液,单蒸水也可以
@雕杰4063：在电泳中用到的缓冲液,我们经常会看到10X,100X或是6X等,这些代表什么意思?浓度?稀释倍数? -
詹绍18592495494…… 楼上错.不是稀释倍数,相反是浓缩倍数!楼主,你只要记得,所有溶液的使用的时候,浓度都是1X.所以,10X的,代表要稀释10倍才能使用;1000X,就是稀释1000倍;6X就是稀释6倍才能使用.
@雕杰4063：tris - 甘氨酸如何配置电泳缓冲液? -
詹绍18592495494…… 所用试剂:Tris碱,甘氨酸和SDS 含量配方:30.3Tris碱,188g甘氨酸,10gSDS,此产品为干粉混合物.用时可以用双蒸水溶解成1L,配成10倍浓缩液,用时再稀释10倍,配好的电泳液用于SDS-PAGE蛋白电泳,可反复使用三到五次,如果...
@雕杰4063：电泳储液什么意思?是指电泳缓冲液吗? -
詹绍18592495494…… NO,储藏液一般是母液,用的时候需要相应的稀释.所谓母液就是高浓度的储藏液.浓度低容易变质. 电泳储液一般50X , 用的时候要稀释到1X,也就是按1ml 50X 储液 + 49ml 去离子无菌水的比例混匀.
@雕杰4063：TAE缓冲液 配方 -
詹绍18592495494…… 你好,我看了你的推断过程,有一个地方有误:Tris-乙酸不代表Tris与乙酸的比例是一比一,实际上配TAE时,根据所需的pH值,Tris与乙酸比例是2:1的.所以1X :0.04mol/l Tris-乙酸=0.04mol/LTris碱以及0.02mol/L乙酸,相应地你就能算出是57.1ml冰乙酸了. 另外,你发现没有,按照你的1X的配方EDTA是0.001mol/L,那么乘以50为0.05mol/L,而50*配方中是0.1mol/L.这两种配方都是正确的:分子克隆附录上面取的是0.05mol/L,takara的技术手册上用的是0.1mol/L,这个影响不大,主要是鳌合Mg,抑制DNase活性. 希望能够帮到你,有问题继续交流!
@雕杰4063：DNA电泳上样缓冲液怎么配 -
詹绍18592495494…… 50*TAE Buffer 配制方法: 1.称量氨基丁三醇 242g,Na2EDTA.2H2O 37.2g 于1L烧杯中; 2.向烧杯中加入约600ml去离子水,充分搅拌均匀; 3.加入57.1ml的冰乙酸,充分溶解; 4.用NaOH调pH至8.3,加去离子水定容至1L后,室温保存. 使用时稀释50倍 即1*TAE Buffer 10*TBE Buffer配制方法: 1.称量氨基丁三醇 108g,Na2EDTA.2H2O 7.44g,硼酸55g 于1L烧杯中; 2.加入约700ml去离子水,搅拌均匀; 3.用NaOH调pH至8.3,加去离子水定容至1L后,室温保存. 使用时稀释10倍 即1*TBE Buffer
