5buffer稀释成1x
@公蚀6953：求助蛋白电泳1*loading buffer -
洪邹15936779276…… 蛋白电泳1*loading buffer可以配制出来,但是却很难在实际使用的时候用上 比如说蛋白电泳5*loading buffer,在使用的时候也就是1个体积的loading buffer要加上4个体积的蛋白样品.这样最后的蛋白电泳loading buffer就被稀释到1*loading buffer 如果说1*loading buffer就是说1体积的loading buffer要加上0体积的蛋白样品,这样的loading buffer配制出来也没办法用.所以说蛋白电泳1*loading buffer是指应用时的情况,而不是配制的浓度
@公蚀6953：6*的buffer怎么稀释成5*的 -
洪邹15936779276…… 比如你有1ml的6*的Buffer 加0.2ml的水 即可得到5*的Buffer
@公蚀6953：DNA琼脂糖凝胶电泳的loading buffer作用是? -
洪邹15936779276…… 作用:使DNA粘度增大,不要再点样中被漂离凝胶; 加入的指示剂 可指示前沿. 1*的浓度 是个经验.浓度太大,可能产生 DNA和buffer中物质难以分开,拖带;指示剂前沿太宽等 适当增加浓度 没问题,但没必要.
@公蚀6953：蛋白变性上样缓冲5x和6x的区别 -
洪邹15936779276…… 蛋白变性上样缓冲5x和6x的区别就是配方量不一样,使用的时候加入的量不一样.5x加入后稀释5倍到1x,6x加入后稀释6倍到1x这样
@公蚀6953：急!!!谁能告诉我8*binding buffer 如何稀释为1*binding buffer??? -
洪邹15936779276…… 1ul8*binding buffer加7ul的水就得到1*binding buffer 全实际有可能不是这样,你还得加入一些别的东西,(你需要结合的东西) 这样一般是加入你样品量的七分之一.使binding buffer终浓度为1* 比如有1ml样品,加入167ul的8*binding buffer ,混匀就可以上柱或者做别的处理.
@公蚀6953：电泳时loading buffer和样品DNA比例多少?实验室常用6x的,为毛有人用1:5,有人1:1呢?请大神解答,3Q~ -
洪邹15936779276…… 这玩意,说白了就是溴酚蓝做一个参照,你不加都一样的能够跑出条带来,我从来都是1:10加的,没问题.所谓6X就是稀释6倍使用,你如果严格的话按1:5加.
@公蚀6953：请问5TBE Buffer 溶液的配方???? -
洪邹15936779276…… 对不起,修改一下答案! TBE 工作液(0.5*): 45mmol/L Tris-硼酸盐,1mmol/L EDTA TBE 贮存液/L(5*):54g Tris,27.5g 硼酸,20ml 0.5mol/L EDTA(pH8.0) TBE通常作为5*或10*的贮存液配制和贮存.这种浓的贮存液pH应为8.3左右.它在应用前稀释,并用同一贮存液制备凝胶溶液和电泳缓冲液.有些研究者习惯用更浓的TBE贮存液,如10*的.但是5*的贮存液更稳定,因为贮存期间溶质不沉淀.经0.45μm滤膜过滤能防止延迟浓的贮存液沉淀的形成.
@公蚀6953：DNA琼脂糖凝胶电泳的loading buffer作用是?6*的一定要稀释成1*的使用吗? - 作业帮
洪邹15936779276…… [答案] 作用:使DNA粘度增大,不要再点样中被漂离凝胶; 加入的指示剂 可指示前沿. 1*的浓度 是个经验.浓度太大,可能产生 DNA和buffer中物质难以分开,拖带;指示剂前沿太宽等 适当增加浓度 没问题,但没必要.
@公蚀6953：1*Buffer Tango与2*Buffer Tango加样量的区别
洪邹15936779276…… 10XBuffer Tango 到1XBuffer Tango稀释10倍; 10XBuffer Tango 到2XBuffer Tango稀释5倍; 以20ul体系算,如果要求1XBuffer,就加2ul 10XBuffer,如要球2XBuffer,就加4ul 10XBuffer
@公蚀6953：SDS - PAGE 5Xloading buffer 配制过程,注意,问的不是配方,高手进 -
洪邹15936779276…… 我想说以下几点: 1.SDS-PAGE loading buffer一般配成2X 的,5X loading buffer确实过于粘稠,且SDS在低温下难溶于水,这就导致你配的buffer“摇都摇不动”了 2.不知你为何要配那么多loading buffer(况且是5X的),这些东西都是用量很...
洪邹15936779276…… 蛋白电泳1*loading buffer可以配制出来,但是却很难在实际使用的时候用上 比如说蛋白电泳5*loading buffer,在使用的时候也就是1个体积的loading buffer要加上4个体积的蛋白样品.这样最后的蛋白电泳loading buffer就被稀释到1*loading buffer 如果说1*loading buffer就是说1体积的loading buffer要加上0体积的蛋白样品,这样的loading buffer配制出来也没办法用.所以说蛋白电泳1*loading buffer是指应用时的情况,而不是配制的浓度
@公蚀6953：6*的buffer怎么稀释成5*的 -
洪邹15936779276…… 比如你有1ml的6*的Buffer 加0.2ml的水 即可得到5*的Buffer
@公蚀6953：DNA琼脂糖凝胶电泳的loading buffer作用是? -
洪邹15936779276…… 作用:使DNA粘度增大,不要再点样中被漂离凝胶; 加入的指示剂 可指示前沿. 1*的浓度 是个经验.浓度太大,可能产生 DNA和buffer中物质难以分开,拖带;指示剂前沿太宽等 适当增加浓度 没问题,但没必要.
@公蚀6953：蛋白变性上样缓冲5x和6x的区别 -
洪邹15936779276…… 蛋白变性上样缓冲5x和6x的区别就是配方量不一样,使用的时候加入的量不一样.5x加入后稀释5倍到1x,6x加入后稀释6倍到1x这样
@公蚀6953：急!!!谁能告诉我8*binding buffer 如何稀释为1*binding buffer??? -
洪邹15936779276…… 1ul8*binding buffer加7ul的水就得到1*binding buffer 全实际有可能不是这样,你还得加入一些别的东西,(你需要结合的东西) 这样一般是加入你样品量的七分之一.使binding buffer终浓度为1* 比如有1ml样品,加入167ul的8*binding buffer ,混匀就可以上柱或者做别的处理.
@公蚀6953：电泳时loading buffer和样品DNA比例多少?实验室常用6x的,为毛有人用1:5,有人1:1呢?请大神解答,3Q~ -
洪邹15936779276…… 这玩意,说白了就是溴酚蓝做一个参照,你不加都一样的能够跑出条带来,我从来都是1:10加的,没问题.所谓6X就是稀释6倍使用,你如果严格的话按1:5加.
@公蚀6953：请问5TBE Buffer 溶液的配方???? -
洪邹15936779276…… 对不起,修改一下答案! TBE 工作液(0.5*): 45mmol/L Tris-硼酸盐,1mmol/L EDTA TBE 贮存液/L(5*):54g Tris,27.5g 硼酸,20ml 0.5mol/L EDTA(pH8.0) TBE通常作为5*或10*的贮存液配制和贮存.这种浓的贮存液pH应为8.3左右.它在应用前稀释,并用同一贮存液制备凝胶溶液和电泳缓冲液.有些研究者习惯用更浓的TBE贮存液,如10*的.但是5*的贮存液更稳定,因为贮存期间溶质不沉淀.经0.45μm滤膜过滤能防止延迟浓的贮存液沉淀的形成.
@公蚀6953：DNA琼脂糖凝胶电泳的loading buffer作用是?6*的一定要稀释成1*的使用吗? - 作业帮
洪邹15936779276…… [答案] 作用:使DNA粘度增大,不要再点样中被漂离凝胶; 加入的指示剂 可指示前沿. 1*的浓度 是个经验.浓度太大,可能产生 DNA和buffer中物质难以分开,拖带;指示剂前沿太宽等 适当增加浓度 没问题,但没必要.
@公蚀6953：1*Buffer Tango与2*Buffer Tango加样量的区别
洪邹15936779276…… 10XBuffer Tango 到1XBuffer Tango稀释10倍; 10XBuffer Tango 到2XBuffer Tango稀释5倍; 以20ul体系算,如果要求1XBuffer,就加2ul 10XBuffer,如要球2XBuffer,就加4ul 10XBuffer
@公蚀6953：SDS - PAGE 5Xloading buffer 配制过程,注意,问的不是配方,高手进 -
洪邹15936779276…… 我想说以下几点: 1.SDS-PAGE loading buffer一般配成2X 的,5X loading buffer确实过于粘稠,且SDS在低温下难溶于水,这就导致你配的buffer“摇都摇不动”了 2.不知你为何要配那么多loading buffer(况且是5X的),这些东西都是用量很...
